脂肪干细胞培养流程（脂肪干细胞培养注意事项）

本文目录一览：

• 1、请问一下存储干细胞的打玻尿酸真的可以抗衰老吗流程是敏感肌怎么护理好得快的简单介绍什么？
• 2、干细胞与抗衰老
• 3、什么是脂肪干细胞上清液疗法？
• 4、干细胞移植过程是怎样的？
• 5、请教小鼠原代脂肪干细胞的形态及分离培养条件
• 6、脂肪干细胞的材料和方法

请问一下存储干细胞的流程是什么？

采血:需要采集客户约150ml-200ml外周血。

2.

生产:采集好的外周血经离心后收集有核细胞,用造血干细胞专用培养基培养,使有核细胞逆转成为造血干细胞。

3.

检测:采集的外周血,干细胞生产的第3天和第6天均做细菌检测、细胞计数和流式细胞,确保干细胞生产过程中不被污染,...

4.

储存:收集生产到第六天的干细胞,分装到2ml的冻存管中,程序性降温到零下80℃后,...细胞存储是讲人体内健康、活性强大的细胞低温储存起来，保持其最大活性，待将来有治病、保健抗衰、改善亚健康的需求时，则可以从细胞存储库中将健康有活力的细胞取出，重新回输到人体，使身体得到及时有效的治疗。

干细胞是形成人体各组织器官的原始细胞。它拥有再生和分化的能力，可增殖为原来相同的细胞，也可分化为其他功能的细胞。因此，干细胞可以用来修补受损的组织或器官，甚至还可以构建出完整的器官。应用干细胞可治疗多种疾病，包括血液免疫系统疾病、神经系统疾病、心脑血管疾病、肿瘤等，是再生医学的重要资源基础。

干细胞与抗衰老

每个人都想拥有一个健康的身体，与亲人一起看日出，和儿女一起欣赏沿途风景，和妻子安享晚年。然而，我免疫器官和免疫细胞的作用们面临着大脑疲劳过度、环境污染、术前或术后恢复期等各种各样的问题，这一切都告诉我们，我们正在走向不可抗拒的老龄化。

    如何延缓衰老？

众所周知，人体是由一个胚胎干细胞分化成亿万个成体细胞组成的。干细胞是一种能够自我复制和具有分化能力的特殊细胞，具备分化成各种组织器官的潜力。

干细胞抗衰老治疗的原理，就是利用干细胞这一特性，取人体组织采样，分离出干细胞并在体外进行培育使其数量增加，重新输回面部、体内，利用干细胞的特殊归巢原理，识别体内老化受损细胞释放的信号，定位到需要修复和新生的部位，定向分化成为该部位细胞，实现对机体功能的整体提升。

    干细胞抗衰老疗法的作用？

干细胞能激活衰老细胞功能，增加正常细胞数量，增加细胞活性，提高细胞质量，预防和延缓细胞病理，恢复细胞正常生理功能，增强免疫力，从而有效去除面部皱纹。从内部和外部减缓衰老过程。输注干细胞后，可以修复患病细胞，重建正常细胞和组织，修复衰老和受损器官，大大改善全身功能，改变身体的衰老状态，调节身体恢复健康。

●全面改善代谢功能

减少血脂、降低血糖、减肥、预防心血管疾病、肥胖症、糖尿病。

●重塑肌肤活力，恢复肌肤

抚平和消除下垂的皮肤，恢复皮肤弹性，减少皮肤皱纹、色素沉着。

●消化系统的重新修复

它可以减缓器官结构的老化，增强胃病的功能和肝胆代谢的功能。

●提高免疫功能

增加免疫细胞活性，提高抗病能力。

●再生脑部神经细胞

预防记忆、认知衰退，失眠，阿尔茨海默病。

●改善性功能

再生修复了生殖系统的退化。

干细胞抗衰老治疗过程

1.诊察说明

2.采血

抽取排查病毒、细菌、感染症状，并为干细胞培养收集养分。

3. 提取

腹部脂肪干细胞前组织提取，腹部麻醉，切开3-4毫米切口提取。

4. 培养

根据细胞活性，需2-5周培养时间，最终在总数3-4亿的细胞中挑选1-2亿活性强的细胞。

5. 回输

将高浓度维他命C营养液以点滴的方式注入体内。用静脉点滴方式把培养后的优质干细胞第一次回输。第一次回输后的1-1.5个月进行第二次回输。

什么是脂肪干细胞上清液疗法？

近年来，以干细胞为核心的再生医疗项目备受关注，从抗衰老、皮肤毛发再生、性功能改善，再到骨骼再生、免疫力提升等，其以促进组织再生或自我修复的治疗模式为人类带来了无限可能。

目前在日本干细胞治疗中，最受欢迎的、效果最显着的、风险最低的就是干细胞上清液疗法。

什么是脂肪干细胞上清液疗法？

脂肪干细胞上清液疗法，是将脂肪干细胞分泌出来的复数的成长因子以及胶原蛋白、玻尿酸等数百种蛋白质用于实际医疗中的治疗方法。

最大限度的使用人类自身的再生能力，来调和自身的成长因子，是安全有效的美容、抗衰、提高身体机能的疗法。

什么是干细胞培养上清液？

首先采取人类脂肪组织→2.进行干细胞分离→3.干细胞增殖培养（干细胞培养上清液）

在干细胞增殖培养过程中，干细胞会分泌出各种细胞因子，所以干细胞培养上清液中富含从干细胞分泌出来的各种细胞因子，这些细胞因子拥有细胞分泌出来的数百种蛋白质，可以调节细胞的增值及分化，使细胞中受损组织及细胞恢复功能受损组织及细胞的恢复及再生是让我们恢复美丽与健康的关键。

干细胞上清液的功能与效果

抗衰老，美容

IGF（胰岛素样生长因子）可促进皮肤再生，有改善皱纹，肌肤弹性再生、增发的效果。

EGF（表皮生长因子）可改善色斑，皮肤暗淡，预防皱纹。

增发，育发

VEGF（血管内皮生长因子）增发，育发

KGF(角质化细胞生长因子)增发，育发

男性功能障碍，组织修复再生，提高免疫力

HGF（干细胞生长因子），PDGF（血小板衍生生长因子）,转化生长因子：治疗男性功能障碍，产生抗原抗体反应，有消炎作用及组织修复作用。

预防老年痴呆

NGF（神经生长因子），BDNF（脑源性神经营养因子）：促进神经细胞成长，预防老年痴呆。

独特治疗理念的医疗中心

日本银座干细胞诊所，位于东京都中央区银座，该院已获得日本厚生劳动省批准的自体脂肪干细胞临床应用资质。是日本少数获得厚生劳动省认可的两种再生医疗机构，厚生劳动省发布的再生医疗委员会委员。

“再生医学”抗衰与疾病治疗为理念，独特而全面的治疗流程：通过自体脂肪培养，让抗衰老、关节炎、谢顶脱发各类患者都可以享受健康快乐的精彩人生。解决顾客对于容颜和身体上的困扰，更致力于利用安全可靠的再生医疗技术，让患者拥有一个由内而外的健康身体。

多睦健康，提供完善的海外就医服务

从患者进行咨询开始到出国就医再回国，提供完善的就医服务,协助患者完成从病例资料的专业翻译、签证的申请、海外的全程陪同翻译服务，都有着严格的要求和标准。公司有自营海外医疗经验团队，势必成为服务于客户的贴心、专业、全面的海外医疗顾问团队。

干细胞移植过程是怎样的？

首先让骨髓中的造血干细胞大量释放到血液中去，这个过程称为“动员”。然后，通过血细胞分离机分离获得大量造血干细胞用于移植，这种方法称为“外周血造血干细胞移植”。这样现在捐赠骨髓已不再抽取骨髓，而只是“献血”了。而且，由于技术的进步，现在运用造血干细胞“动员”技术，只需采集分离约50至200毫升外周血即可得到足够数量的造血干细胞。采集足够数量的造血干细胞后，血液可回输到捐献者体内。

通过干细胞移植过程可以治疗多种疾病，而且效果明显。造血干细胞移植可以治疗多种血液病、实体瘤、免疫缺陷病和重度急性放射病，这已被很多人所熟悉。据介绍，造血干细胞移植目前广泛应用于恶性血液病、非恶性难治性血液病、遗传性疾病和某些实体瘤治疗，并获得了较好的疗效。1990年后这种治疗手段迅速发展，全世界1997年移植例数达到4.7万例以上，自1995年开始，自体造血干细胞移植例数超过异基因造血干细胞移植，占总数的60%以上。同时移植种类逐渐增多，提高了临床疗效！

干细胞的移植不会对于贡献者造成什么身体的影响！干细胞移植成为现代医学中间不可或缺的技术手段！

请教小鼠原代脂肪干细胞的形态及分离培养条件

小鼠脂肪来源干细胞的分离、培养及鉴定

脂肪来源干细胞（Adipose-DerivedStemCells,ADSCs)作为组织工程的种子细胞正受到越来越多的关注。 本实验采用一次消化多次收集与差速贴壁法分离小鼠腹股沟及附睾脂肪组织中的ADSC。通过倒置显微镜观察ADSC的一般形态；透射电子显微镜观察ADSC的超微结构；流式细胞术及激光共聚焦显微镜检测ADSC表面标志；利用特定的诱导液诱导ADSC分化及利用扫描电子显微镜观察ADSC与胶原支架的相容性。 结果显示ADSC呈长梭形或成纤维细胞样，旋涡状或束状交叉生长。ADSC细胞体积大，胞质内含有线粒体及粗面内质网等细胞器。ADSC的生长符合干细胞的生长规律，并可在体外稳定传至第9代。ADSC表达CD44及CD29，不表达CD34。成骨诱导剂诱导后，细胞内碱性磷酸酶表达量增加，细胞基质发生钙化。成脂肪诱导剂诱导后，细胞质内可见较多小脂滴。说明ADSC具有分化为成骨细胞及脂肪细胞的潜能。ADSC能够在胶原支架上铺展生长，说明其与胶原支架具有良好的相容性。 本实验建立了分离、培养小鼠ADSC的技术方法，为将来利用小鼠ADSC进行皮肤、肌腱、血管及神经组织修复的动物实验研究提供了前期实验基础和技术支持。

脂肪干细胞的材料和方法

1.1 实验仪器与材料

倒置荧光显微镜(IX71, Olympus);数字彩色摄像系统(Sony3CCD);图像分析软件(Image-pro-plus);离心机(Z23, Herm 德国);Transwell (3450-clear, corning, Costar 美国);纯水机(Millipore-Q-Synthesis, Millipore Ltd.法国);六孔板(Corning Incorporated 3516, Costar 美国)。

DMEM 培养基(高糖，GIBCO 公司);胰酶(GIBCO 公司);乙二胺四乙酸钠(上海试剂一厂);胎牛血清(兰州民海生物工程有限公司);Ⅰ型胶原酶(Sigma 公司);油红O(Sigma 公司);地塞米松(Sigma 公司);胰岛素(Sigma 公司);吲哚美辛(Sigma 公司);异丁基甲基黄嘌呤(Sigma公司)。

实验所采用的脂肪组织均来源于大连沙医生美容医院，并征得患者同意。

1.2 脂肪细胞培养

将吸脂来源的脂肪组织用D-Hanks 冲洗，去除残留的血细胞和组织碎片，把脂肪组织放入离心管中，记录原始体积。向组织中加入等体积的0.1%Ⅰ型胶原酶，放入37℃气浴振荡器中消化30 min。然后将消化好的组织静置5 min，待其分层后，用吸管吸取位于悬液上层的脂肪细胞，将含有脂肪细胞的悬液以1000 r/min(167g)，离心2 min 后弃掉下层悬液得到脂肪细胞。

1.3 脂肪干细胞的分离和培养

参照文献，同上述脂肪细胞的分离一样，将脂肪组织冲净，称重后消化。当消化完成后，弃掉上层未消化的脂肪组织，将下层的细胞悬液以1500 r/min(375g)，离心10 min 后弃上清，得到离心管底部的脂肪干细胞团，将其重悬，密度调整到1×105mL-1，然后接种在培养面积为25 cm2 的细胞培养瓶中。

当干细胞长满培养瓶后按一传二进行传代，具体的传代方法是：首先，用D-Hanks 冲洗一遍细胞，然后加入2 mL 的混合酶溶液(0.25%胰酶和0.02%EDTA)消化，当在显微镜下观察到细胞发生明显的变形，缩成球状后，立即用含有10%胎牛血清的培养基中止消化，并用吸管轻轻吹打瓶底部，确保细胞完全脱落分离到悬液中，再把细胞悬液置于离心机上，以1000 r/min (167g)，离心5 min。最后，将离心得到的细胞团重悬，调整密度为合适密度进行接种。

1.4 脂肪干细胞和脂肪细胞的共培养

将准备好的脂肪干细胞和脂肪细胞分别置于Transwell 的上室和下层中，脂肪干细胞与脂肪细胞的个数之比分别为1:5，1:1，2:1 和5:1(4 组分别命名为A、B、C 和D 组)进行共培养，其中每孔中脂肪细胞的数量均为1×105 个。以上每组均做平行实验(n=3)。

1.5 成脂诱导对照实验

将干细胞以1.5×105 每孔的密度接种在六孔板中，以正常培养基培养的样本为成脂分化实验阴性对照组，以成脂诱导培养基培养的样本为阳性对照组。具体方法是：向基础培养基(DMEM+10%胎牛血清)中加入1 μmol/L 的地塞米松、10 μmol/L 的胰岛素、200 μmol/L 的吲哚美辛和0.5 mmol/L 的异丁基甲基黄嘌呤，配制成脂诱导培养基，每周换2 次液，直到进行成脂染色观察为止，以上对照组均做平行实验(n=3)。

1.6 油红 O 和台盼蓝复合染色

用 0.5%油红O，对成脂诱导后的各组样本进行染色。具体操作方法是：先用D-hanks将样本细胞冲洗充分，然后加入油红稀释染色10~15 min，(油红O 稀释液配制方法:0.5%饱和油红O 原液按3:2(油红O:蒸馏水)加入蒸馏水，然后过滤，待用)，接下来用75%的乙醇溶液将样本分化至间质清晰，然后蒸馏水冲，最后再用台盼蓝对脂质以外的细胞核部分进行复染，并于100 倍镜下观察拍照。以每组样本随机选取5~10 视野进行拍照观察以考察共培养方法的成脂诱导分化效果。

1.7 流式检测

通过酶消化法将细胞收集到离心管中，细胞悬液调整密度为1×105 mL-1，800r/min(120g)，离心5 min，弃掉上清，用4℃的冷D-Hanks 冲洗重悬细胞，再次将细胞悬液以800 r/min，离心5 min，之后弃去上清。然后用D-Hanks 将细胞重悬至1 mL，加入抗体5~10 μL，避光，冰上放置30 min。用D-Hanks 冲洗，离心，弃上清，重复该冲洗过程2~3次，确保将未结合抗体除净最后，加入约200 至300 μL 的D-Hanks 制成悬液，用流式细胞仪检测。

1.8 Hoechst/PI 死活染色

弃掉旧培养基，用D-Hanks 冲洗除去残留培养基然后向每个Transwell 孔中加入质量浓度为1 mg/mL 的Hoechst 33342 大约10 μL，使其终质量浓度为10 μg/mL，37℃下避光反应10 min。待Hoechst 染色完成后，用D-Hanks 冲洗除净残余的Hoechst 染料接下来，再加入用PI 染液，使其终质量浓度为10 μg/mL，4 ℃下避光反应15 min，染色完成也用D-Hanks冲净残余染液最后，将染好的细胞置于倒置荧光显微镜下观察、拍照。

2 结果与讨论

所示的脂肪细胞，与文献中描述的脂肪细胞相一致，图中所示的脂肪干细胞与文献中描述的相一致。均形态完整，生长状态良好，适合进行共培养的后续研究。为成脂诱导阴性对照组，表明脂肪干细胞不能自发生成脂质;图为成脂阳性对照组，在成脂诱导剂作用下，脂肪干细胞能够生成脂质，经统计约有20.3%的脂肪干细胞发生了成脂分化。为共培养后脂肪干细胞染色图片，其中脂肪干细胞与脂肪细胞之比分别为1:5，1:1，2:1 和5:1(其中每孔中的脂肪细胞数均为1×105 个)，尽管在不同比例下对脂肪干细胞和脂肪细胞进行tranwell 间接共培养，然而经过8 天共培养后，脂肪干细胞并不能象成脂阳性对照组那样产生脂质油滴。

此实验结果的原因可能是由于共培养的持续时间过短所致。据文献报导，成脂诱导分化的持续时间通常在1~2 周，即7~4d 左右。因此，有可能由于本实验中脂肪细胞与脂肪干细胞共培养时间过短，导致脂肪干细胞与脂肪细胞没能得到充分作用，所以不能实现成脂诱导分化。

基于上述分析，需延长共培养时间至20d，进一步考察共培养方式中干细胞成脂分化的可行性。

为脂肪细胞与脂肪干细胞经过20d 共培养后脂肪干细胞的Hoechst/PI 死活染色结果。Hoechst 染料对活的细胞具有特异性染色的特点，PI 则对死细胞特异性染色。从中可以看到，两组中的细胞均呈明亮的蓝色，说明细胞的活性很好。基本上看不到PI 染成红色的死细胞的存在。表明，本实验中，经过共培养后的脂肪干细胞，仍拥有良好的活性。

研究可以发现，共培养组a，d，g 3 组均未发生明显的成脂分化现象。通过观察b，e，h 3 幅图发现，经过成脂诱导剂诱导的3 个不同接种密度的阳性对照组中均出现成脂分化，图中可以看到成脂分化后的细胞内出现大量密集在一起的小脂滴，当小脂滴达到一定数量后，就会聚合成为较大脂滴。这些成脂分化的现象与文献中报道的脂肪干细胞成脂分化的过程相一致。通过观察c，f，i 3 组未加任何诱导剂，仅仅使用基础培养基培养的脂肪干细胞的阴性控制对照组，可以看到，脂肪干细胞均匀生长于培养界面上，经过20d 的培养细胞的生长状态良好，未发生明显细胞破碎和衰退死亡的改变。

a，b，c 和d 为各个共培养组的对照组的流式结果图，图e，f，g 和h 为共培养20d 后，脂肪干细胞的表面标记表达流式检测结果。

通过分析可以看到，不同脂肪干细胞与脂肪细胞共培养比例下，共培养组B(共培养比例为1:1)和共培养组C(共培养比例为2:1)的流式结果，与相应的控制对照组B 和组C 相比，CD105 的表达发生下降(b,f,d,h)，CD105 表达分别是，共培养组B 为4.8%，对照组B 为12.4%;共培养组C 为1.3%，对照组C 为6.8%。而另外一个间充质细胞的特异性表面标记CD44，(a,c,e,g)，共培养组B 中为2.9%，对照组B 中为3.1%，没有显着变化;在另一共培养组C 中为0.9%，对照组C 中为5.4%，发生显着变化。

通过以上分析发现(f,g)，经过共培养的脂肪干细胞，其表面抗原CD105的表达发生明显的降低，其结果接近不表达。CD105作为间充质细胞特异表达的表面抗原发生这一改变意味着，脂肪干细胞在共培养过程中可能发生了一定程度上的分化。

3 结 论

采用人体吸脂来源的干细胞与脂肪细胞进行共培养，8d 之内不能促使脂肪干细胞成脂分化。且将共培养时间延长至20d 后，仍未能观察到脂肪干细胞发生明显的成脂分化现象。通过流式细胞仪对共培养的脂肪干细胞进行细胞表面抗原标记表达的分析，发现共培养后脂肪干细胞与非共培养对照组相比较，其中间充质细胞特异性表达标记CD105 发生明显降低，这就意味着本实验的共培养过程中，脂肪干细胞内部已发生一定程度的改变。